1. Smear yöntemi, malzemeyi bir cam slayt üzerinde eşit şekilde kaplayarak bir slayt hazırlama yöntemidir.
Smear malzemeleri arasında tek hücreli organizmalar, küçük yosun, kan, bakteriyel kültür sıvısı, hayvan ve bitkilerin gevşek dokuları, testisler, anterler vb.
Bozlama sırasında aşağıdakiler not edilmelidir: (1) Cam slayt temiz olmalıdır. (2) Cam slayt düz olmalıdır. (3) Kaplama düzgün olmalıdır. Smear sıvıyı cam kayarlığın merkezinin sağ tarafına bırakın ve bir neşter bıçağı veya kürdan ile eşit olarak yayın. (4) Kaplama ince olmalıdır. Bir itici olarak başka bir cam slayt kullanın ve düzgün bir ince tabaka oluşturmak için cam slaytın yüzeyi boyunca cam slaydın yüzeyi boyunca yavaşça itin (iki cam slayt arasındaki açı 30 derece -45 derecesi olmalıdır). (5) fiksasyon. Fiksasyon gerekiyorsa, fiksasyon için kimyasal fiksifler veya kurutma yöntemleri (bakteriler) kullanılabilir. (6) Boyama. Metilen mavisi bakteriler için kullanılır, Wright'ın lekesi kan için kullanılır ve iyot bazen kullanılabilir. Boyama sıvısı tüm smear yüzeyini örtmelidir. (7) Durul. Emici kağıt ile kurutun veya kurutun. (8) Sızdırmazlık. Uzun süreli depolama için, slaytı mühürlemek için Kanada sakızı kullanın.
2. Presleme yöntemi, biyolojik malzemeleri bir slayt ve bir kapak kayması arasına yerleştirmek, belirli bir basınç uygulamak ve doku hücrelerini ayırmak için bir yöntemidir.
3. Montaj yöntemi, bir slayt örneği yapmak için biyolojik malzemelerin bir bütün olarak sızdırmazlığı bir yöntemidir. Bu yöntem geçici veya kalıcı slaytlar yapmak için kullanılabilir.
Montaj slaytları için malzemeler şunları içerir: Chlamydomonas, Spirogyra, Amip, Nematodlar gibi mikroorganizmalar; Hydra, bitki yaprağı epidermisi; Böcek kanatları, bacaklar, ağız parçaları, insan oral epitel hücreleri, vb.
Montaj yöntemini yaparken aşağıdakilere dikkat edin: (1) Slaytı tutarken, düz tuttuğunuzdan veya bir platforma yerleştirdiğinizden emin olun. Su damlarken, su miktarı uygun olmalıdır, böylece sadece kapak kaymasıyla kaplıdır. (2) Malzeme, üst üste binmeden ve aynı düzlemde düzleştirilmeden bir diseksiyon iğnesi veya cımbız ile yayılmalıdır. (3) Kapak kaymasını yerleştirirken, kabarcıkları önlemek için bir taraftan su damlasına yavaşça örtün. (4) Boyama sırasında, lamelin bir tarafına bir damla boyama sıvısı bırakın ve lamel altındaki numunenin eşit olarak renklendirilmesi için diğer taraftan emici kağıtla emin. Boyama sonra, bir damla temiz su bırakmak, boyama sıvısını emmek ve bir mikroskop altında gözlemlemek için aynı yöntemi kullanın.
4. Kesitler, organizmalardan kesilmiş ince dilimlerden yapılmış slayt örnekleridir.
Farklı gereksinimler nedeniyle, elle dilimlemek için bir bıçak kullanabilir veya doku bloğunu parafin içine yerleştirebilir veya düşük sıcaklıkta dondurabilir ve bir mikrotomla dilimleyebilirsiniz. Optik mikroskop gözlemi için 5-10 mikron dilimlerini kesin. Epoksi reçine veya metakrilik asit içine gömülü doku bloklarından kesilmiş ultra ince dilimler, 20-50 nanometre kalınlığına sahiptir ve özellikle bir elektron mikroskobu altında gözlem içindir. Genel öğretim için kullanılan kök uçlarının ve sapların bölümlerine genellikle parafin bölümleri denir.